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基因治療的核心目標之一,是將一段功能正常的基因“原裝”替換患者體內的致病序列。然而,這一目標長期面臨關鍵技術瓶頸——如何在不引入雙鏈斷裂(DSB)的前提下,將基因級別大小(>1 kb)的 DNA 片段高效、精準地寫入哺乳動物基因組。
精準大片段基因插入一直是基因編輯領域的“硬骨頭”。基于 DSB 的 NHEJ/HDR 策略存在隨機插入、細胞毒性及體內遞送效率低等問題;以prime editing(PE)為核心的新一代工具(如 PASTE、PASSIGE)雖避免了 DSB,但依賴整合酶或重組酶,仍存在 junction scar、免疫原性及遞送復雜性等挑戰。更關鍵的是,現有 PE 相關技術在 >400 bp 插入時效率顯著下降,距離真正的基因治療應用仍有差距。此外,質粒供體在體內攝取效率低且易激活免疫反應,也限制了其轉化潛力。
近日,The Ohio State University 醫學院劉彬團隊,聯合 UMass Chan Medical School RNA 治療研究所薛文與Erik J. Sontheimer團隊,在Nature雜志發表了題為: 的研究論文,報道了一種全新的大片段基因組插入策略——Prime Assembly(PA)。該方法實現了從0.1 kb到11 kb的精準插入,對0.8 kb供體的插入效率最高可達50%,且無需DSB、重組酶或同源定向修復(HDR)。
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PA 的核心思路簡潔而巧妙:twin prime editing(twinPE)可在基因組靶點兩側生成約 35 nt 的單鏈 flap。如果將線性雙鏈 DNA(dsDNA)供體兩端設計為與這些 flap 互補,是否可以利用細胞內源修復機制,實現大片段 DNA 的精準拼接?研究者將 PCR 擴增獲得的線性 dsDNA 供體與 PE6c 及 twin-epegRNA 共轉染至 HEK293T 細胞,成功在 AAVS1 位點實現 0.8 kb、2.2 kb 和 4 kb 片段的高效定向插入,效率顯著優于 evoCAST 和 PAINT 3.0。值得注意的是,PA 不依賴外源 DNA 聚合酶,在 G1 及 G2/M 阻斷條件下依然高效,提示其機制獨立于細胞周期及經典 HDR 通路—這一特性對于原代細胞和體內應用尤為重要。
此外,利用了多項技術創新提升效率與精準性:① DNA-PK 抑制提升效率:NHEJ 抑制劑 AZD-7648 可顯著提升 PA 效率,并將 flap 區域 indel 率由 12–17% 降至 9% 以下;結合 odsDNA 供體時,錯誤率可降至 ~0.6%,接近測序背景水平;② 3′ 懸掛單鏈供體(odsDNA):通過 λ 外切酶處理 PCR 產物生成 3′ 懸掛結構,提高與 flap 的退火效率,大幅提升精準度;③ 細胞內 Gibson 拼裝(多供體 PA):受 Gibson Assembly 啟發,研究者將長供體拆分為多個具有約 30 bp 重疊的片段,實現細胞內多片段同步拼裝插入,為突破 AAV 4.7 kb 遞送限制提供了新思路;④ 多樣化供體形式:包括單鏈 DNA(ssDNA)在內的多種供體形式均適用于 PA,進一步增強了供體設計與遞送的靈活性。
作為技術能力的關鍵驗證,研究團隊成功將 11.3 kb 的 DMD(抗肌萎縮蛋白)cDNA 精準插入 AAVS1 位點,并通過 ddPCR、junction PCR 及 Nanopore 長讀長測序多重驗證其準確性。此外,PA 還可將 2.4 kb 的 CD19 CAR-P2A-GFP 精準整合至 TRAC 位點,為 CAR-T 細胞治療提供了有力工具。研究團隊開發了適用于 PA 的脫靶檢測方法 PA-tag(基于 PE-tag/UDiTaS 改良)。全基因組分析顯示,PA 具有高度位點特異性,無論使用 dsDNA、odsDNA 還是 ssDNA 供體,均未檢測到顯著脫靶信號。
Prime Assembly的提出,為基因組大片段精準插入提供了一條兼具高效率、高精準性與高簡便性的新路徑。其“無 DSB、無整合酶、無質粒、供體可由 PCR 直接制備”的特點,為未來非病毒體內遞送奠定了重要基礎。盡管 PA 的分子機制仍有待進一步闡明,其體內應用仍面臨關鍵挑戰,包括 DNA-PK 抑制策略的安全性評估以及高效遞送體系的建立。隨著這些問題的逐步解決,PA 有望在基因治療領域展現出廣闊的應用前景。
劉彬為第一作者及共同通訊作者,薛文與 Sontheimer 為共同通訊作者。目前 Bin Liu 教授課題組正在招聘博士后,歡迎有興趣的研究人員聯系咨詢。
原文鏈接:https://www.nature.com/articles/s41586-026-10460-4
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